細胞是生物學(xué)實驗的重要材料，也是生物細胞學(xué)實驗的基礎(chǔ)。藥物、基因功能、疾病機理等的相關(guān)研究多數(shù)需要在細胞水平進行闡釋。在細胞培養(yǎng)和消化的操作過程中，受人員操作和環(huán)境條件的影響比較大，因此每個環(huán)節(jié)都有可能導(dǎo)致操作的失敗。以下是我們匯總了關(guān)于細胞培養(yǎng)和細胞消化的小貼士，希望能給正操作細胞培養(yǎng)和細胞消化的研發(fā)人員帶來幫助。
細胞系身份需明確
之所以選定某種細胞系開展實驗，是因為所選細胞系的一些特性符合研究方向的設(shè)定。比如組織特性，疾病特性，功能特性，基因表達特性等。一旦用錯了細胞株，對研究結(jié)果的判斷就會帶來很大的誤差和不確定性。
而近年來，多個權(quán)威機構(gòu)發(fā)現(xiàn)細胞系在培養(yǎng)和流通過程中，出現(xiàn)了很嚴重的交叉污染。據(jù)不完全統(tǒng)計，單就HeLa細胞系導(dǎo)致的污染致使3萬多篇論文結(jié)果的準確性存在問題（doi:10.1371/journal.pone.0186281）。而這種情況不僅僅限于HeLa細胞。多個權(quán)威機構(gòu)研究人員檢測發(fā)現(xiàn)超過451個細胞系已被其它細胞完全吸收，在所檢測細胞中污染占比46%，可見細胞交叉污染的現(xiàn)象非常普遍。因此，做實驗前對細胞株驗明正身非常重要。如果是在機構(gòu)購買的細胞株，最好能讓供方提供合格的STR鑒定報告。
細胞培養(yǎng)和消化
細胞培養(yǎng)大致分為兩種，一種是懸浮細胞培養(yǎng)，一種是貼壁細胞培養(yǎng)，無論是哪種方式，進行細胞培養(yǎng)時一般會通過以下幾個步驟：
細胞準備
↓
細胞傳代
↓
細胞培養(yǎng)基配置
↓
細胞接種
↓
培養(yǎng)條件控制
↓
細胞觀察和培養(yǎng)
↓
細胞實驗
↓
細胞凍存
當然以上只是細胞培養(yǎng)過程的一個基本框架，實際操作可能會因細胞類型、實驗要求和實驗室的標準操作規(guī)程而有所不同。
細胞消化是研發(fā)人員在操作細胞培養(yǎng)過程中一個步驟，一般細胞長至80%-90%密度則需要傳代消化，貼壁細胞傳代前，需要把細胞用消化試劑從培養(yǎng)容器表面解離出來，細胞得以分離成單個懸液傳代至含新鮮培養(yǎng)基的新容器內(nèi)；常見的細胞消化方法有三種：酶消化法、離子螯合法、機械消化法。
其中，酶消化法是用得最多的，主要使用胰蛋白酶，一般濃度在0.25-0.5%，消化的時間根據(jù)細胞種類、作用溫度等因素而變化。一般來說，0.25%的胰酶作用于單層貼壁的細胞，在37℃條件下消化1-5分鐘就足夠了。需要注意的是，Ca2+、Mg2+和血清、蛋白質(zhì)可降低胰酶的活性，因此不含Ca2+、Mg2+，含EDTA的胰酶活性更高; 最后，可用含血清的培養(yǎng)基終止胰酶消化。
胰蛋白酶大致可以分為兩種，一種是傳統(tǒng)使用的動物源性的胰蛋白酶，主要提取自?；蜇i的胰腺組織，其缺點是會帶來病毒污染的風險；另一種則是非動物源性胰酶，即利用基因重組技術(shù)生產(chǎn)的重組胰蛋白酶。重組胰蛋白酶具有許多潛在用途，包括用于生產(chǎn)藥品、用作研究工具以及生物技術(shù)應(yīng)用，例如蛋白類藥物的生產(chǎn)、細胞的分離、疫苗生產(chǎn)以及用于細胞分析的組織樣本的制備，同時解決了傳統(tǒng)使用的豬或牛胰蛋白酶可能帶來病毒污染的風險。我國2020版藥典第一次收錄了無動物源性重組胰蛋白酶的質(zhì)量標準?？傮w而言，重組胰蛋白酶在生物藥及科研領(lǐng)域是不可缺少的工具酶。
重組胰蛋白酶在實際應(yīng)用中的使用步驟：
① 配制緩沖液：用滅菌水配制10L HBSS平衡鹽溶液。
HBSS平衡鹽溶液配方：400mg/L KCl，60mg/L KH2PO4，350mg/L NaHCO3，8000mg/L NaCl，121mg/L Na2HPO4·12H2O，1000mg/L葡萄糖。
② 取1g重組胰蛋白酶（細胞培養(yǎng)級），用HBSS平衡鹽溶液溶解澄清，使胰蛋白酶的酶活濃度為500USP units/ml-1500 USP units/ml，或者使胰蛋白酶的質(zhì)量濃度為0.1mg/ml-0.3mg/ml。（500USP units/ml的濃度適合大部分細胞的消化，原代細胞、組織等可適當提高濃度至1500 USP units/ml）
注意事項
1）冀百康生物重組胰蛋白酶消化液含有EDTA，應(yīng)注意其不同細胞的使用適配性。且本重組胰蛋白酶消化液不含抑菌劑，使用過程中要特別注意無菌操作，避免消化液被微生物污染。
2）建議將本重組胰蛋白酶消化液分裝為100ml/瓶，在-15~-20℃條件下存放，能穩(wěn)定存放12 個月。不宜 4℃長期保存，切忌反復(fù)凍融造成胰蛋白酶的活性降低，并可減少污染的機會。
常見問題
Q1：什么是EDTA？為什么重組胰蛋白酶要加入EDTA？
EDTA作用較胰蛋白酶緩和，主要作用在于能從組織生存環(huán)境中吸取Ca2+、Mg2+，這些離子是維持組織完整的重要因素。但EDTA單獨使用不能使細胞完全分散，因而常與胰蛋白酶按不同比例混合使用，效果較好。常用比例為1：1或者2份EDTA：1份胰蛋白酶。EDTA的工作液濃度為0.02%，用不含Ca2+、Mg2+的BSS配置。如果使用EDTA，在終止消化前，需用緩沖液將消化液清除后才能加培養(yǎng)液。
Q2：如何控制胰酶消化時間？
不同細胞對消化液的敏感性不同，胰酶消化的時間也會有差異。胰酶消化時間與胰酶的濃度，是否含EDTA，胰酶的儲存時間，胰酶的儲存溫度，是否反復(fù)凍融，消化加入的胰酶體積，消化溫度及細胞的密度有關(guān)。消化對于新購買的細胞，建議先用低濃度的胰酶仔細去摸索一下消化時間，可每隔1分鐘鏡下觀察細胞是否變圓，記錄最佳消化時間，下一次操作參考之前的記錄來控制時間即可。
Q3: 培養(yǎng)基誤存于-20℃，溶解后繼續(xù)使用?
在-20℃下，培養(yǎng)基中的鹽容易析出，培養(yǎng)基再次融化后，有的鹽可能無法重新溶解，從而導(dǎo)致培養(yǎng)基營養(yǎng)成分和滲透壓改變，培養(yǎng)細胞時，容易細胞破裂而死亡，建議丟棄該培養(yǎng)基,使用新的培養(yǎng)基用于細胞培養(yǎng)。
Q4：消化過度的主要特征有哪些?
會導(dǎo)致相當一部分細胞損傷和死亡，剛傳代后的培養(yǎng)液表面漂浮細胞團，肉眼可見漂著小片白色膜狀物。如果細胞團中都是死細胞，則不會貼壁。如果細胞團中仍存在有活力的細胞，就會貼壁造成局部細胞密度不均勻，該局部較快形成中央壞死細胞區(qū) 。
Q5：細胞消化不下來是什么情況?
(1)有些細胞貼壁比較牢，因此每次消化吹打之后總會剩下一些細胞，或者細胞長得較好而培養(yǎng)瓶太久沒換，為了顧全大部分有活力的細胞，細胞消化要適可而止。(2)不同種類的細胞所需消化時間也不同。因為貼壁細胞的消化一般在2分鐘左右，對于個別出現(xiàn)的細胞難以消化，經(jīng)過多次消化和反復(fù)吹打之后仍無效，就放棄吧。
*參考文獻：
1.Drexler HG, Uphoff CC. Mycoplasma contamination of cell cultures: Incidence, sources, effects, detection, elimination, prevention. Cytotechnology. 2002;39:75–90.
2.Merten O. Virus contaminations of cell cultures – A biotechnological view. Cytotechnology. 2002;39:91–116.
3.生物醫(yī)學(xué)小坑https://picx.zhimg.com/80/v2-7229d60c7ce1e7c56a532394fp?source=1940ef5c.
購物車（
